摘要3-4
Abstract4-8
文献综述8-17
2 材料和策略17-23
2.1 材料17-18
2.1.1 菌种17
2.1.2 细胞株17
2.1.3 培养基17
2.1.4 仪器设备与试剂17-18
2.1.5 主要试剂的配制18
2.2 策略18-23
2.2.0 摇瓶种子制备18
2.2.1 粒毛盘菌 YM218 胞外多糖发酵培养18-19
2.2.2 胞外多糖含量的测定19
2.2.3 胞外多糖(EPS)的分离提取19-20
2.2.4 生物量的测定20
2.2.5 YM218 胞外多糖摇瓶发酵条件的优化20-21
2.2.6 深层发酵21
2.2.7 YM218 胞外多糖的制备21-22
2.2.8 细胞培养[84]22
2.2.9 胞外多糖抗肿瘤活性的测定22-23
3 结果与浅析23-38
3.1 YM218 胞外多糖摇瓶发酵培养基优化23-26
3.1.1 不同碳源及其质量浓度对 YM218 胞外多糖产量的影响23-24
3.1.2 不同氮源及其质量浓度对 YM218 胞外多糖产量的影响24-25
3.1.3 无机盐对 YM218 胞外多糖产量的影响25-26
3.2 YM218 胞外多糖摇瓶发酵条件优化26-29
3.2.1 起始 pH 值对 YM218 胞外多糖产量的影响26-27
3.2.2 温度对 YM218 胞外多糖产量的影响27
3.2.3 转速对 YM218 胞外多糖产量的影响27-28
3.2.4 培养时间对 YM218 胞外多糖产量的影响28-29
3.3 正交试验结果29-30
3.4 YM218 胞外多糖摇瓶发酵生长曲线的确定30
3.5 5L 发酵罐发酵条件优化30-33
3.5.1 搅拌转速对胞外多糖产量的影响30-31
3.5.2 通气量对胞外多糖产量的影响31-32
3.5.3 YM218 发酵罐发酵生长曲线的确定32-33
3.6 胞外多糖提取工艺优化33-36
3.6.1 不同 pH 条件下对胞外多糖得率的影响33-34
3.6.2 不同提取温度对胞外多糖得率的影响34-35
3.6.3 不同浓缩倍数对胞外多糖得率的影响35-36
3.7 胞外多糖抗肿瘤活性探讨36-38
3.7.1 乙醇分级沉淀36
3.7.2 乙醇分级沉淀获得的多糖样品对 Hep-2 细胞增殖抑制率的测定36-37
3.7.3 不同浓度的样品 3 对 Hep-2 细胞增殖抑制率的测定37-38
4 讨论38-41
4.1 培养基对 YM218 胞外多糖液体发酵的影响38
4.2 YM218 胞外多糖液体发酵条件的探讨38-39
4.3 通气量和搅拌速度对 YM218 胞外多糖深层发酵的影响39
4.4 YM218 胞外多糖提取工艺的探讨39
4.5 YM218 胞外多糖抗肿瘤活性的探讨39-41
5 结论41-42
5.1 粒毛盘菌 YM218 摇瓶发酵条件优化41
5.2 粒毛盘菌 YM2185L 发酵罐发酵发酵条件优化41
5.3 粒毛盘菌 YM218 胞外多糖提取工艺41
5.4 粒毛盘菌 YM218 胞外多糖抗肿瘤活性41-42