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猕猴胚胎干细胞分离、鉴定、培养与应用

收藏本文 2024-04-08 点赞:6466 浏览:20977 作者:网友投稿原创标记本站原创

摘要:本论文以猕猴胚胎干细胞为主要研究对象,在猕猴胚胎干细胞的分离、培养及鉴定、猕猴胚胎干细胞体外持续培养体系的建立及优化、应用猕猴胚胎干细胞为细胞模型研究LIF对介导胚胎着床的滋养层细胞分化的影响效应、以及应用猕猴胚胎干细胞为细胞模型研究三种光敏药物的光敏毒性以及光敏生物活性了研究。研究主要了以下结果:1、猕猴卵母细胞体外成熟培养、体外受精和早期胚胎体外培养技术,由4只超排的成年猕猴取得92个处于期的猕猴卵母细胞,选取其中的22个于HECM-10培养体系培养后,了6个高质量的猕猴囊胚,自然孵出的囊胚中分离6个内细胞团,并1株具有高核仁/胞质比,具有的核仁,集落边界清楚,其内的细胞明晰的,具有胚胎干细胞特征的猕猴类ES细胞——RS5细胞。经5个月的连续传代后,RS5细胞仍保持了正常二倍体的核型,其染色体数目与正常猕猴的一样,均为42条。碱性磷酸酶组织化学染色,结果为阳性,此细胞为未分化态的原始类胚胎干细胞。由胚胎干细胞多能性分化的初步研究结果来看,在高密度和解除抑止的下,此RS5细胞是能发展为多种分化细胞的。2、建立了猕猴胚胎干细胞RS366.4体外持续培养、扩增及冻存培养体系。3、白血病抑制因子(LIF)在胚胎着床中起着作用??LIF可参与人滋养层细胞分化而介导胚泡着床。已有的关于LIF与滋养层细胞分化间关系的研究结果是矛盾的。为避免由早期胚胎标本或胎盘来源的细胞滋养层细胞模型的不足,本实验选用由猕猴RS366.4 ES细胞来源的早期分化滋养层细胞为模型研究。细胞流式仪结果低浓度的LIF可促进绒毛合胞体滋养层的分化,高浓度的LIF可促进绒毛外侵入性滋养层细胞的分化。细胞免疫组化结果则经LIF处理后,侵入性绒毛滋养层细胞的标志物之一?? Fibronectin呈阳性。4、北醌化合物为性能优良的光敏剂。本研究首次以R366.4 ES细胞为模型,测试了EA的光敏毒性,并首次报道了EA的光敏生物活性。经不同光照时间处理后,低浓度的光敏化的EA对R366.4细胞均无细胞毒性作用。在此浓度范围内,对于Hce-8693细胞,EA,HA及HB则均以浓度依赖的方式引起其细胞凋亡,其光敏抑制效应为HAEAHB。对于B16细胞,EA也以浓度依赖的方式引起其细胞凋亡。这些结果EA、HA及HB均有较的光敏抑癌生物活性。关键词:胚胎干细胞论文猕猴论文滋养层细胞论文白血病抑制因子论文北醌化合物论文

    摘要4-5

    Abstract5-17

    章 胚胎干细胞研究进展17-37

    1.1 胚胎干细胞概述17

    1.2 胚胎干细胞研究中常用名词的17-18

    1.2.1 ES 细胞(Embryonic Stem Cell,ES)17

    1.2.2 EC 细胞(Embryonic Carcinoma Cell,EC)17

    1.2.3 EG 细胞(Embryonic Germ Cell,EG)17-18

    1.3 胚胎干细胞建系的研究历程18

    1.4 胚胎干细胞建系路线18-19

    1.4.1 依制备方法不同分类18

    1.4.1.1 机械法18

    1.4.1.2 免疫手术法18

    1.4.2 依ES 细胞来源不同分类18-19

    1.4.2.1 囊胚法18

    1.4.2.2 胚胎原始生殖细胞(PGCs)法18

    1.4.2.3 核移植细胞法18-19

    1.5 建立和维持胚胎干细胞的条件19-23

    1.5.1 饲养层19-20

    1.5.2 培养基组成20

    1.5.3 条件培养基20-21

    1.5.4 细胞因子对ES 细胞的影响21-22

    1.5.4.1 分化抑制因子??白血病抑制因子(LIF)21

    1.5.4.2 干细胞生长因子(SCF)21-22

    1.5.4.3 碱性成纤维细胞生长因子(bFGF-)22

    1.5.4.4 其它生长因子22

    1.5.5 增殖的ICM、胚胎干细胞的离散及扩大培养22-23

    1.6 胚胎干细胞的生物学特性及鉴定方法23-25

    1.6.1 形态和生长特征23

    1.6.2 核型分析23

    1.6.3 碱性磷酸酶((Alkapne Phosphatase,P)活性测定23

    1.6.4 胚胎干细胞特异性表面抗原的表达23

    1.6.5 胚胎干细胞的端粒酶活性23-24

    1.6.6 细胞冷冻和解冻24

    1.6.7 转录因子Oct-4 的表达24

    1.6.8 体内外分化能力鉴定24-25

    1.7 人胚胎干细胞建系中存在的问题25-26

    1.8 胚胎干细胞的分化研究26-29

    1.8.1 ES 细胞分化研究的理论基础26-27

    1.8.1.1 内源性因素26

    1.8.1.2 外源性因素26-27

    1.8.1.2.1 分化诱导26

    1.8.1.2.2 分化抑制26-27

    1.8.1.2.3 细胞外物质的介导作用27

    1.8.2 ES细胞的分化研究现状27-28

    1.8.2.1 向神经细胞的定向分化27

    1.8.2.2 向造血细胞的定向分化27

    1.8.2.3 向内皮细胞的定向分化27-28

    1.8.2.4 向其它细胞定向分化的研究28

    1.8.2.4.1 由小鼠ES细胞向其它细胞定向分化28

    1.8.2.4.2 由蛙ES细胞向其它细胞定向分化28

    1.8.2.4.3 由人ES细胞向其它细胞定向分化28

    1.8.3 ES细胞在细胞替代治疗中的潜在应用价值28-29

    1.8.3.1 血液系统疾病28

    1.8.3.2 神经系统疾病28-29

    1.8.3.3 肝脏疾病29

    1.9 ES细胞分化研究尚需解决的问题29-31

    1.9.1 定向诱导分化ES细胞为特定类型的功能细胞29

    1.9.2 定向诱导分化ES细胞为有功能的器官29

    1.9.3 定向诱导分化的可调性29-30

    1.9.4 组织相容性问题30

    1.9.5 ES细胞的遗传学稳定性问题30-31

    .2.1.1 实验动物及细胞系38

    2.2.1.2 主要化学试剂38-39

    2.2.1.3 主要试剂39-40

    2.2.1.4 实验用具40

    2.2.1.5 主要仪器40

    2.2.2 方法40-44

    2.2.2.1 鼠胚成纤维细胞(PMEFs)的制备及培养40-41

    2.2.2.1.1 Balb/c 鼠的交配40

    2.2.2.1.2 PMEFs 的制备及培养40-41

    2.2.2.2 PMEFs 生长分裂抑制的处理及冻存41-42

    2.2.2.2.1 丝裂霉素 C 处理法41

    2.2.2.2.2 γ-射线辐照处理法41-42

    2.2.2.3 猕猴囊胚的42

    2.2.2.4 猕猴胚胎干细胞(ES)的分离及培养42-43

    2.2.2.5 ES 细胞培养一般程序43

    2.2.2.6 ES 细胞克隆的消化分离及冻存43

    2.2.2.7 猕猴胚胎干细胞核型的鉴定43-44

    2.2.2.8 猕猴胚胎干细胞未分化特性—碱性磷酸酶(P)活性的测定44

    2.2.2.9 猕猴胚胎干细胞多能性分化的初步分析44

    2.3 结果与讨论44-56

    2.3.1 囊胚的猕猴类胚胎干细胞的分离、培养和初步鉴定44-52

    2.3.1.1 猕猴囊胚的44-47

    2.3.1.2 猕猴类胚胎干细胞的分离和持续培养47-50

    2.3.1.2.1 RS5 细胞的形态特征观察48-49

    2.3.1.2.2 RS5 细胞的生长特征观察49-50

    2.3.1.3 RS5 细胞核型的鉴定50

    2.3.1.4 碱性磷酸酶活性的测定50-51

    2.3.1.5 RS5 细胞多能性分化的初步分析51

    2.3.1.6 讨论51-52

    2.3.1.7 52

    2.3.2 RS366.4 猕猴胚胎干细胞培养体系的建立52-56

    2.3.2.1 PMEFs 的及处理52

    2.3.2.2 培养基对 ES 细胞活性的影响52-53

    2.3.2.3 冷冻剂对 PMEFs 及 ES 细胞活性的影响53

    2.3.2.4 消化液及其消化方式对 ES 细胞扩增活性的影响53

    2.3.2.5 不同培养时间ES 细胞的碱性磷酸酶活性测定53-54

    2.3.2.6 体外定向分化实验的关键——类胚胎的54-55

    2.3.2.7 55-56

    .1.5 主要仪器123

    5.2.2 方法123-124

    5.2.2.1 三种北醌化合物的生物合成、分离及结构鉴定123

    5.2.2.2 Kirby-Bauer 纸片扩散法测定 EA、HA、HB 抗菌生物活性123-124

    5.2.2.3 R366.4 细胞的光敏细胞毒性测定124

    5.2.2.4 EA、HA 及 HB 对 Hce-8693 细胞的抑制效应测定124

    5.2.2.5 EA 对 816 细胞的抑制效应测定124

    5.2.2.6 可见光光照124

    5.2.2.7 细胞流式仪分析124

    5.2.2.8 统计学分析124

    5.3 结果124-134

    5.3.1 三种北醌化合物的生物合成、分离及结构鉴定124-126

    5.3.2 EA、HA、HB 抗菌生物活性126-128

    5.3.3 R366.4 细胞的光敏细胞毒性测定128-129

    5.3.4 EA 对肿瘤细胞系的光敏抑制效应测定129-131

    5.3.4.1 EA 诱导 Hce-8693 细胞凋亡的光敏抑制效应测定129-130

    5.3.4.2 EA 诱导816 细胞凋亡的光敏抑制效应测定130-131

    5.3.5 HA 诱导Hce-8693 细胞凋亡的光敏抑制效应测定131-132

    5.3.6 HB 诱导Hce-8693 细胞凋亡的光敏抑制效应测定132-133

    5.3.7 EA、HA 及HB 对Hce-8693 细胞的抑制效应测定133-134

    5.4 讨论134-135

    5.5 135-136

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