摘要：紫杉醇(pacptaxel)是1971年以美国西部短叶红豆杉中分离提取出来的一种天然抗肿瘤药物,具有独特的抗癌机制。紫杉醇的主要靶点是细胞内微管系统,通过推动微管聚合抑制微管解聚,使细胞阻滞于G2/M期,并最终导致细胞死亡。目前紫杉醇己成为包括乳腺癌、卵巢癌、非小细胞性肺癌等多种实体瘤的一线治疗药物,运用前景十分广阔。然而,紫杉醇的开发也面对着诸多不足,如来源有限,水溶性差等,而获得性耐药现象的出现则是制约其临床疗效的最主要不足。紫杉醇耐药的产生机制十分复杂,主要包括：药物外排泵ABC转运蛋白过表达和功能上调导致细胞内药物浓度降低；药物作用靶点转变；凋亡信号通路调控异常以及紫杉醇耐药相关基因TRAG-3过表达等。目前,解决耐药不足主要有两条思路：一是利用肿瘤耐药逆转剂抑制转运蛋白的功能或表达,以恢复耐药肿瘤细胞对化疗药物的敏感性；二是开发本身具有抗耐药活性的化合物直接杀伤或抑制耐药肿瘤的生长。近年来,抗耐药探讨越来越受到关注。我国具有丰富的天然产物资源,以天然产物中分离提取有效成分并进行相应的结构修饰是当前抗耐药探讨的一大热点。在本探讨的第一部分,我们以对紫杉醇耐药的细胞株及体内耐药裸鼠异体移植瘤模型为探讨对象,考察了一种紫杉烷类衍生物Lx2-32c体内外的抗肿瘤耐药活性,并对其可能的抗耐药机制作出探讨。为探讨肿瘤多药耐药的机制,或筛选耐药逆转剂及具有抗耐药活性的化合物,建立多药耐药细胞系及体内裸鼠异体移植瘤模型是主要手段之一。在本探讨的第二部分,我们建立了对紫杉醇耐药的人胃腺癌BGC-823细胞亚系和体内耐药模型,并对这两个模型进行了耐药性的鉴定,以及主要耐药机制的探讨。第一部分新型紫杉烷类化合物Lx2-32c抗肿瘤耐药药效学及机制探讨本部分实验主要探讨了Lx2-32c体内外抗肿瘤耐药作用,并对其主要的耐药机制进行了较深入的探讨。Lx2-32c是由中国医学科学院药物探讨所天然药物化学探讨室方唯硕探讨员课题组通过对三尖杉宁碱(Cephalomannine)进行结构修饰半合成得到的一类全新紫杉烷类衍生物中活性最强的一个。此类类化合物已申请中国化合物专利(申请号200610080890.7)与国际PCT专利(申请号PCT/CN2007/003235)体外探讨中,Lx2-32c可抑制多种不同组织来源的耐药细胞的生长,如人乳腺癌多药耐药细胞株MX-1/T及亲本细胞株MX-1,人肺腺癌多药耐药细胞株A549/T及其亲本细胞株A549,人乳腺癌多药耐药细胞株MCF-7/T及其亲本细胞株MCF-7,人胃腺癌多药耐药细胞株BGC-823/TA及亲本细胞株BGC-823,人口腔上皮癌多药耐药细胞株KB/V及其亲本细胞株KB,以及人肝癌多药耐药细胞株Bel-7402/5-Fu及亲本细胞株Bel-7402。MTT法测得其在体外的半数抑制浓度IC50为29.61±5.76nmol/L(以1.02至98.92nmol/L)。接下来,我们选择人乳腺癌多药耐药细胞株MX-1/T及亲本细胞株MX-1作为探讨对象,以Pacptaxel作为阳性对照药,探讨Lx2-32c较确切的抗耐药作用机制。SRB法测得Lx2-32c对MX-1/T细胞的GI50为67.35nM,集落形成实验测定Lx2-32c对MX-1/T细胞的IC50为5.33nM,均显著低于Pacptaxel的相应值。体内实验表明Lx2-32c能够抑制对紫杉醇耐药的人乳腺癌MX-1裸鼠异体移植瘤的生长。Lx2-32c(15、30、45mg/kg)对裸鼠移植瘤生长的抑制率分别为40.11%、63.46%及77.67%,呈现较好的剂量效应联系,而Pacptaxel30mg/kg组的抑瘤率仅为22.85%。对移植瘤组织的TUNEL检测亦显示Lx2-32c可剂量依赖性诱导耐药瘤组织产生凋亡现象。接下来我们探讨了Lx2-32c对MX-1/T细胞内微管蛋白的作用。首先,我们利用微管蛋白间接免疫荧光法及Western Blot法检测细胞内微管的原位聚合,以探讨Lx2-32c对耐药细胞微管动态平衡的影响。免疫荧光实验结果表明,Lx2-32c的作用方式呈典型的紫杉醇样作用,可推动细胞内微管聚合,诱导细胞内微管形成微管束,阻碍细胞内纺锤丝的形成,以而干扰细胞的有丝分裂。细胞内原位微管聚合实验表明,Lx2-32c能够显著地将细胞内微管的动态平衡由“可溶”态向“不溶”态推进,使微管向着聚合态偏移,结果同间接免疫荧光结果类似。然后我们检测了细胞内Tau蛋白的表达,结果表明,与亲本MX-1细胞相比,耐药的MX-1/T细胞Tau蛋白表达显著增高,Lx2-32c可剂量依赖性地降低Tau蛋白的表达。P-gp蛋白与肿瘤的多药耐药现象联系密切,首先,我们利用RT-PCR及Western Blot法检测了P-gp在细胞内的表达,结果表明,MX-1/T细胞是一株典型的P-gp高表达细胞株,这可能是其具有多药耐药性的主要理由,而Lx2-32c对MX-1/T细胞内P-gp的表达无显著影响。接下来,我们考察了MX-1/T细胞内的药物蓄积情况。质谱浅析表明,相同剂量的Lx2-32c在细胞内的蓄积量显著高于Pacptaxel的蓄积量,脱药后Lx2-32c的外排亦显著少于Pacptaxel,其脱药后的6h蓄积率为脱药时的32.63%,显著多于Pacptaxel的6h蓄积率(1.74%)。Rhodamine123蓄积实验显示,与MX-1/T细胞的基础荧光强度相比,Pacptaxel可使细胞内的荧光强度有一定程度的回升,提示此时P-gp在转运Rhodamine123的同时参与Pacptaxel的外排,故P-gp对Rhodamine123的转运减少,胞内荧光增强。Lx2-32c对细胞内荧光强度影响不大,说明此时P-gp对Lx2-32c的外排较少,仍主要参与Rhodamine123的外排,此结果间接反映了Lx2-32c在MX-1/T细胞内的蓄积多于Pacptaxel的蓄积。10uMVerapamil与不同剂量Pacptaxel合用72h后,可显著逆转MX-1/T细胞对Pacptaxel的耐药性,逆转倍数达38.89倍,而其与不同剂量Lx2-32c合用72h后,对Lx2-32c的IC50值影响不大,结果提示P-gp在MX-1/T细胞对Pacptaxel产生耐药的历程具有重要地位,而对Lx2-32c在耐药细胞内的蓄积影响不大。药物与P-gp作用的另一个重要方面是二者的结合能力。计算机辅助设计提示,Lx2-32c与P-gp的结合力较弱,Fitness评分为31.41,显著低于Pacptaxel与P-gp的Fitness评分(36.90)。P-gp ATPase的测定也表明与Pacptaxel处理组相比,Lx2-32c三个剂量组(20,100,500nM)产生的荧光强度均显著增加,说明ATP的消耗量减少,由于P-gp对底物的转运有赖于ATP的水解,故此结果间接反映了P-gp对Lx2-32c的外排较Pacptaxel组减少,与前述实验结果吻合。另外,由于Lx2-32c处理组产生的荧光强度呈剂量依赖性降低,说明Lx2-32c在耐药细胞内增加的蓄积并不是由于其具有抑制P-gp功能的作用。结合其他实验,我们推测,Lx2-32c在细胞内的蓄积较Pacptaxel增加的理由在于其与P-gp亲和力较低,故P-gp对其外排亦降低,由此Lx2-32c可在P-gp高表达的耐药细胞中仍保持有效浓度,这是其具有抗耐药活性的最主要机制。解除耐药细胞的凋亡抑制是抗耐药药物探讨的一大思路,我们也考察了Lx2-32c对MX-1/T细胞的凋亡诱导作用。流式细胞术显示不同剂量的Lx2-32c可使MX-1/T细胞产生G2/M期阻滞,染色体数目不稳定性及凋亡峰(亚G1峰)的出现。Annexin V-FITC/PI双染法定量地检测了Lx2-32c(20、100、500nM)作用48h产生的凋亡百分比,分别为14.09%、30.67%和63.52%。利用DAPI染色及AO/EB染色均可观察到Lx2-32c作用后MX-1/T细胞呈现的典型凋亡形态,如核固缩,核碎裂等。DNA ladder实验可见Lx2-32c诱导细胞DN段化,产生显著的梯形条带。JC-1染色及DiOC6染色均显示Lx2-32c对细胞线粒体膜电位的降低作用。Western Blot结果显示,Lx2-32c可剂量依赖性地升高Bax/Bcl-2比例,使细胞色素C、AIF以线粒体释放到胞浆,进而活化Caspase-9,-3,和PARP,启动内源性凋亡通路,而对Fas, FasL、Caspase-8的表达无影响。最后,我们检测了Lx2-32c对肿瘤细胞侵袭转移及血管生成的影响。划痕-愈合试验结果表明,50nM Lx2-32c持续作用24h,显著抑制MX-1/T细胞侧向迁移能力；粘附试验结果表明,10nM及50nM Lx2-32c预处理30min,可显著抑制MX-1/T细胞与人工基底膜成分Matrigel的粘附；明胶酶谱法结果表明,Lx2-32c作用24h,可在一定程度上抑制人乳腺癌细胞MDA-MB231细胞分泌MMP-9及MMP-2,人纤维肉瘤细胞HT-1080分泌aMMP-9,以及人黑色素瘤细胞分泌MMP-2。另外,10nM及50nM Lx2-32c可显著减弱人脐静脉内皮细胞融合细胞EA-hy926的铺展能力及体外形成血管环的能力,显示出一定的抗血管生成作用。综上所述,Lx2-32c是一种具有确切的体内外抗耐药活性的新型紫杉烷类化合物,其抗耐药机制可能与推动微管聚合,降低Tau蛋白表达,较少被P-gp外排以而能保持较高的细胞内药物蓄积浓度,以及诱导耐药细胞凋亡有关,同时,Lx2-32c亦显示出一定的体外抗肿瘤侵袭转移及抗血管生成的作用。第二部分紫杉醇耐药的人胃腺癌BGC-823/TA细胞株及BGC-823/Pacptaxel裸鼠异种移植瘤模型的建立及耐药机制的探讨本部分探讨主要是建立并鉴定了对紫杉醇耐药的人胃腺癌BGC-823/TA细胞株及体内耐药的BGC一823/Pacptaxel裸鼠异种移植瘤模型,并对其耐药机制进行了探讨。本探讨选用人肺腺癌细胞株BGC-823作为亲本细胞,以紫杉醇对BGC-823细胞的IC1。为初始诱导剂量,经紫杉醇小剂量逐步增加剂量诱导和克隆选择,18个月后,成功建立了能在含2.00×10-8rnol/L紫杉醇的培养基中正常生长和传代的耐药株BGC-823/TA,耐药倍数为92.31倍。MTT法检测显示BGC-823/TA细胞对Docetaxel. Vincristine.Adriamycin及Lx2-32c等多种细胞毒类化合物也具有出不同程度的交叉耐药性,体现出典型的多药耐药特点。与亲本BGC-823细胞相比,BGC-823/TA细胞的细胞形态、细胞核形态、细胞周期分布、运动能力,粘附能力等基本生物学特点无显著转变,但生长速率较亲本细胞略微减慢,集落形成能力也有所降低,集落形成率分别为62.88%和74.38%。间接免疫荧光检测显示两株细胞内微管蛋白形态无显著转变,Western Blot法检测显示,BGC-823/TA细胞内p微管蛋白亚型(βⅠ、βⅡ、βⅢ、βⅣ微管蛋白)的表达与亲本BGC-823细胞无显著差别,两株细胞内Tau蛋白的表达量也差别不大。P-gp.MRP及LRP等耐药蛋白的表达及活性是细胞多药耐药性形成的重要机制。RT-PCR检测发现BGC-823/TA细胞MDR1表达显著升高,间接免疫荧光法与Western Blot法均显示BGC-823/TA细胞P-gp高表达,Western Blot法还显示BGC-823/TA细胞内其它药泵蛋白如MRP.BCRP.LRP表达未见变化。P-gp蛋白的功能探讨证实BGC-823/TA细胞泵出Rodaminel23.阿霉素及Flutax-1的能力强于BGC-823细胞。质谱检测显示BGC-823/TA细胞内Pacptaxel含量显著低于BGC-823胞内含量,且脱药2h后BGC-823/TA细胞内Pacptaxel含量下降更为显著。MTT法检测显示同时加入药泵抑制剂Verapamil后BGC-823/TA细胞可恢复对Pacptaxel的敏感性。上面陈述的探讨结果表明,BGC-823/TA细胞是一株获得性多药耐药细胞株,其耐药机制主要由于MDR1mRNA的表达增高导致细胞表面P-gp蛋白过表达,以而使P-gp的药物外排泵功能亢进,最终使胞内Pacptaxel有效浓度降低,出现耐药现象。与体外模型相对应,我们同时建立了对紫杉醇耐药的人胃腺癌BGC-823裸鼠异种移植瘤模型,该裸鼠模型经历15代传代,紫杉醇的诱导剂量由1Omg/kg提升至30mg/kg,最终得到体内耐药模型BGC-823/Pacptaxel。裸鼠异体移植瘤实验证实,耐药的BGC-823/Pacptaxel肿瘤生长速率比亲本BGC-823肿瘤略快,但无显著性差别。给予20mg/kg Pacptaxel治疗后,BGC-823/Pacptaxel肿瘤的抑制率及RTV均显著低于BGC-823肿瘤,体现出一定的耐药性。对BGC-823/Pacptaxel瘤块进行WesternBlot检测,耐药肿瘤出现P-gp表达增高,且随传代次数的增加,药物对肿瘤不断诱导,耐药肿瘤与亲本肿瘤间的P-gp表达差别愈显著,说明P-gp蛋白的过表达可能是导致BGC-823/Pacptaxel肿瘤对紫杉醇耐药的一个重要理由。关键词：Lx2-32c论文肿瘤多药耐药论文紫杉烷类论文P-gp论文微管论文凋亡论文
英文缩略词6-9
摘要9-14
Abstract14-19
第一部分 新型紫杉烷类化合物Lx2-32c抗肿瘤耐药药效学及机制探讨19-87
前言20-23
实验材料23-27
实验策略27-41
实验结果41-76
1. Lx2-32c对耐药细胞的基本药效学检测41-46
1.1 MTT法测定Lx2-32c对多种肿瘤耐药细胞的生长抑制作用41-42
1.2 MTT法检测Lx2-32c对MX-1/T细胞不同作用时间的影响42
1.3 SRB法测定Lx2-32c对MX-1/T细胞的生长抑制作用42-43
1.4 Lx2-32c对紫杉醇耐药的人乳腺癌细胞MX-1/T形态的影响43-44
1.5 Lx2-32c对MX-1/T细胞生长曲线的影响44-45
1.6 集落形成试验测定Lx2-32c对MX-1/T细胞集落形成的抑制作用45-46
2. Lx2-32c对体内耐药的裸鼠异体移植瘤模型的药效学检测46-48
2.1 Lx2-32c对紫杉醇耐药的MX-1裸鼠异体移植瘤模型的生长抑制作用46-47
2.2 TUNEL法检测肿瘤组织凋亡情况47-48
3. Lx2-32c对耐药细胞内微管蛋白的作用48-51
3.1 间接免疫荧光法观察Lx2-32c对MX-1/T细胞内微管的影响48-49
3.2 Western blot法检测Lx2-32c对MX-1/T细胞内微管动态平衡的影响49-50
3.3 Western blot法检测Lx2-32c对MX-1/T细胞内Tau蛋白的影响50-51
4. Lx2-32c抗耐药活性与MX-1/T细胞内P-gp的联系51-58
4.1 Lx2-32c对MX-1/T细胞内P-gp mRNA及蛋白表达水平的影响51-52
4.2 质谱检测MX-1/T细胞内Lx2-32c及Pacptaxel的蓄积52-54
4.3 Rhodam 123蓄积实验54-55
4.4 药泵抑制剂Verapamil与Lx2-32c合用后对MX-1/T细胞存活率的影响55-56
4.5 Lx2-32c及Pacptaxel与P-gp的分子对接模型56-57
4.6 Pgp ATPase活性测定57-58
5. Lx2-32c对MX-1/T细胞周期分布及的凋亡的影响58-69
5.1 Lx2-32c对MX-1/T细胞周期分布及凋亡的影响58-60
5.2 DAPI染色法检测凋亡60-61
5.3 AO/EB染色法检测MX-1/T细胞凋亡61-62
5.4 Annexin Ⅴ-FITC/PI双染法检测细胞凋亡62-63
5.5 DNA ladder检测细胞凋亡63
5.6 Lx2-32c对MX-1/T细胞内caspase-9,-3及PARP表达水平的影响63-65
5.7 Lx2-32c对MX-1/T细胞内caspase-3/7活性的影响65
5.8 Lx2-32c对MX-1/T细胞内Fas,FasL及caspase-8表达水平的影响65-66
5.9 Lx2-32c对MX-1/T细胞线粒体膜电位的影响66-68
5.10 Lx2-32c对线粒体蛋白细胞色素C及AIF释放的影响68
5.11 Lx2-32c对MX-1/T细胞内Bax及Bcl-2蛋白表达水平的影响68-69
6. Lx2-32c对肿瘤细胞侵袭转移及血管生成的影响69-76
6.1 Lx2-32c对MX-1/T细胞株运动能力的影响70-71
6.2 Lx2-32c对MX-1/T细胞与基底膜成分粘附的影响71-72
6.3 Lx2-32c对人纤维肉瘤细胞HT-1080、人乳腺癌细胞MDA-MB231和人黑色素瘤细胞A375分泌MMPs的影响72-73
6.4 Lx2-32c对血管内皮细胞铺展能力的影响73-74
6.5 Lx2-32c对体外血管生成的影响74-76
讨论76-82
结论82-83
A细胞的基本生物学性状101-1052.1 形态学观察101
2.2 生长曲线101-102
2.3 集落形成率102-103
2.4 细胞周期分布103
2.5 细胞核形态103-104
2.6 细胞运动能力104
2.7 细胞粘附能力104-105
3. BGC-823/TA细胞内微管的有着状态105-109
3.1 BGC-823/TA细胞内微管的有着状态105-106
3.2 BGC-823/TA细胞内微管蛋白亚型表达的检测106
3.3 BGC-823/TA细胞内β微管蛋白基因测序106-109
3.4 BGC-823/TA细胞内Tau及p-Tau蛋白表达的检测109
4. BGC-823/TA细胞耐药基因及耐药蛋白表达的检测109-111
4.1 RT-PCR法检测细胞MDR-1 mRNA的表达109-110
4.2 Western blot法检测细胞膜P-gp表达的差别110-111
4.3 间接免疫荧光检测细胞P-gp的表达111
5. BGC-823/TA细胞膜转运蛋白功能的检测111-116
5.1 BGC-823/TA细胞Rhodamine123蓄积能力降低111-112
5.2 BGC-823/TA细胞阿霉素蓄积能力降低112-113
5.3 BGC-823/TA细胞对Flutax-1的外排功能增强113
5.4 BGC-823/TA细胞内Pacptaxel的残余量降低113-115
5.5 Verapamil逆转BGC-823/TA细胞的耐药性115-116
6. 对紫杉醇耐药的BGC-823裸鼠异种移植瘤模型的建立和鉴定116-119
6.1 对紫杉醇耐药的人胃腺癌BGC-823体内裸鼠移植瘤模型耐药性的建立和鉴定116-117
6.2 Western Blot检测不同代间亲本肿瘤与耐药肿瘤的P-gp蛋白的表达117-119
讨论119-124
结论124-125
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