本站原创摘要4-5
Abstract5-10
第1章 引言10-34
1.1 引论10-12
1.2 介孔材料概述12-15
1.2.1 介孔材料的合成12-13
1.2.2 介孔材料的修饰策略13-15
1.3 介孔材料作为纳米载体的运用15-27
1.3.1 介孔硅纳米粒子的生物相容性15-16
1.3.2 介孔硅纳米粒子的靶向修饰16-17
1.3.3 基于介孔硅纳米粒子的刺激响应控释系统17-26
1.3.4 介孔硅纳米粒子响应系统目前探讨有着的局限26-27
1.4 聚合物微球传统制备策略的局限27-28
1.5 微流控液滴技术28-32
1.5.1 微流控液滴的形成及优点28-30
1.5.2 微流控液滴制备聚合物微球30-31
1.5.3 微流控液滴技术制备载药聚合物微球的进展及潜在不足31-32
1.6 本论文的探讨思路32-34
第2章 Redox 响应的被动靶向 MSNs 制备及抗癌药物控释探讨34-51
2.1 本章引论34-35
2.2 实验部分35-40
2.2.1 实验材料35-36
2.2.2 MSNs 的制备与修饰36
2.2.3 药物装载及门禁构建36-37
2.2.4 体外药物控释探讨37-38
2.2.5 基于细胞凋亡试验的药物 redox 响应控释评价38-39
2.2.6 细胞内吞作用的评价探讨39-40
2.2.7 实验仪器设备40
2.2.8 统计浅析40
2.3 结果与讨论40-49
2.3.1 MSNs 载体的表征40-44
2.3.2 药物 redox 响应控释探讨44-46
2.3.3 药物 redox 响应释放的细胞凋亡探讨46-48
2.3.4 MSNs 载体的细胞内吞作用评价探讨48-49
2.4 小结及展望49-51
第3章 Redox 响应的主动靶向 MSNs 制备及抗癌药物控释探讨51-67
3.1 本章引论51-53
3.2 实验部分53-56
3.2.1 实验材料53
3.2.2 MSNs 的制备与修饰53
3.2.3 靶向 MSNs 载体的制备53-54
3.2.4 体外药物控释探讨54
3.2.5 基于细胞凋亡试验的药物控释探讨54-55
3.2.6 不同细胞内吞作用的比较探讨55-56
3.2.7 实验设备仪器56
3.3 结果与讨论56-66
3.3.1 MSNs 载体的表征56-59
3.3.2 还原剂种类和浓度对药物 redox 响应控释的影响59-61
3.3.3 药物 redox 响应控释的细胞凋亡评价探讨61-64
3.3.4 基于细胞内吞的药物载体靶向比较探讨64-66
3.4 小结及展望66-67
第4章 Redox 和 pH 双重响应的主动靶向 MSNs 制备和药物控释探讨67-80
4.1 前言67-68
4.2 实验部分68-70
4.2.1 实验材料68-69
4.2.2 MSNs 的制备和修饰69
4.2.3 靶向 MSNs 药物载体的制备69
4.2.4 药物体外控释探讨69
4.2.5 药物 redox 响应控释的细胞凋亡试验评价69-70
4.2.6 细胞内吞作用探讨70
4.2.7 实验设备仪器70
4.3 结果与讨论70-78
4.3.1 MSNs 表征70-72
4.3.2 Redox 和 pH 双重响应药物控释探讨72-74
4.3.3 药物 redox 响应控释的细胞凋亡探讨74-76
4.3.4 不同细胞对不同药物载体的内吞作用评价探讨76-78
4.4 小结及展望78-80
第5章 超亲水修饰 PDMS 微流控芯片制备紫杉醇-聚乳酸微球及缓释探讨80-96
5.1 本章引论80-81
5.2 实验部分81-85
5.2.1 实验材料与设备81-82
5.2.2 芯片制作与修饰82-83
5.2.3 单分散液滴和微球的微流制约备83
5.2.4 液滴和微球的表征83-84
5.2.5 载药量和包封率的测定84
5.2.6 紫杉醇聚乳酸微球体外释放探讨84-85
5.3 结果与讨论85-91
5.3.1 PDMS 芯片的超亲水修饰85-87
5.3.2 单分散液滴形成的探讨87-88
5.3.3 单分散载药聚乳酸微球的制备88-89
5.3.4 紫杉醇载药量和包封率的测定89-90
5.3.5 药物体外释放模型及动力学探讨90-91
5.4 单分散壳聚糖微球的制备91-95
5.5 小结95-96
第6章 结论与展望96-98