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污水处理除磷微生物筛选与除磷条件优化

收藏本文 2024-04-17 点赞:7011 浏览:23607 作者:网友投稿原创标记本站原创

摘要:在水污染引起的水体富营养化蓝藻爆发事件频繁发生的今天,磷含量超标是水体富营养化的主要因素之一,为此,探讨开发了多种除磷的策略。生物除磷因其廉价高效,不易形成二次污染等优点被广泛运用于污水处理中。本课题的主要探讨目标是筛选能高效除磷的除磷菌;探讨影响除磷菌生长及除磷的因素,以及除磷菌在废水中的运用;通过对发酵培养条件的优化提升菌体浓度,为除磷菌制剂化探讨及工业化运用打下基础。主要探讨内容和结果如下:1、利用蓝白斑筛选法以废水处理系统的活性污泥样品中筛选得到一株好氧除磷菌。对菌株进行形态特点鉴定和分子生物学鉴定,确定其为Pseudomonas putida.,并命名为Pseudomonas putida P10。该菌的传代稳定性好,除磷能力稳定,适合工业运用开发;2、对除磷菌的培养条件及除磷条件进行优化。探讨发现,柠檬酸钠为最适生长碳源,有利于提升Pseudomonas putida P10的除磷效果;最适培养初始pH值范围为6-8,最适生长pH6.5;最适培养温度为31°C;铁离子、锰离子及铜离子对菌体生长有推动作用,其中铁离子的作用较显著,可以提升菌浓8.1%;除磷条件优化结果:Pseudomonas putida P10适合的除磷初始pH范围为6-8,最适除磷初始pH为6.0;最适除磷温度为30°C;铁离子、锰离子对菌体除磷有推动作用,其中铁离子作用最显著,可提升磷浓度降低量46.0%; Pseudomonas putida P10对不同的磷源去除效果相差较大,菌体对以磷酸氢二钾状态有着的磷去除效果最好,平均除磷速率达到11.23mg/(g h);Pseudomonas putida P10在实际废水中除磷效果良好;3、经探讨发现,牛肉膏蛋白胨培养基补加甘油为较佳的小罐发酵培养基,最适合菌体细胞生长的碳氮比为7左右,有利于除磷的合成废水碳氮比为8左右;发酵罐中最佳培养pH值为8,采取流加培养对策,最高菌浓为8.72g/l;采取发酵液制备除磷制剂时添加保护剂可延长保藏时间。关键词:生物除磷论文Pseudomonas论文putida论文P10论文磷浓度降低量论文污水处理论文

    摘要3-4

    Abstract4-7

    第一章 绪论7-13

    1.1 探讨背景7-8

    1.1.1 我国水体受磷污染近况7

    1.1.2 除磷微生物制剂的近况7-8

    1.2 常用除磷策略8-10

    1.2.1 物理除磷策略8

    1.2.2 化学除磷策略8-9

    1.2.3 生物除磷策略9-10

    1.2.4 其他除磷策略10

    1.3 除磷微生物10-11

    1.3.1 除磷微生物的探讨进展10-11

    1.3.2 检测单胞菌除磷性能的探讨11

    1.4 论文的探讨的作用、探讨目标及探讨内容11-13

    1.4.1 探讨作用及探讨目标11-12

    1.4.2 探讨内容12-13

    第二章 除磷菌的筛选及鉴定13-17

    2.1 实验材料13-14

    2.1.1 菌样来源13

    2.1.2 实验药品13

    2.1.3 实验仪器13

    2.1.4 培养基13-14

    2.2 测定策略14

    2.3 实验策略14-15

    2.3.1 富集培养14

    2.3.2 菌株的分离与纯化14

    2.3.3 除磷菌的筛选14

    2.3.4 菌种鉴定14-15

    2.4 实验结果与讨论15-16

    2.4.1 除磷菌筛选结果15

    2.4.2 除磷菌鉴定结果15-16

    2.5 本章小结16-17

    第三章 除磷菌培养条件优化及除磷条件优化17-29

    3.1 实验材料17

    3.1.1 实验药品17

    3.1.2 实验仪器17

    3.1.3 培养基17

    3.2 测定策略17-18

    3.3 实验策略18

    3.3.1 生长曲线测定18

    3.3.2 扩大培养及除磷能力检测18

    3.4 实验结果与讨论18-28

    3.4.1 生长曲线测定及传代稳定性探讨18-20

    3.4.2 Pseudomonas putida P10 生长条件优化20-23

    3.4.3 Pseudomonas putida P10 除磷条件优化23-28

    3.5 本章小结28-29

    第四章 除磷菌发酵罐培养及保存条件优化29-35

    4.1 实验材料29

    4.1.1 实验药品29

    4.1.2 实验仪器29

    4.1.3 培养基29

    4.2 测定策略29-30

    4.3 实验策略30

    4.4 实验结果与讨论30-33

    4.4.1 摇瓶培养培养基碳氮比(C/N)优化30-31

    4.4.2 发酵罐培养优化31-32

    4.4.3 菌液保藏条件优化32-33

    4.5 本章小结33-35

    第五章 总结与展望35-37

    5.1 总结35

    5.2 展望35-37

    致谢37-39

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