中文提要4-6
Abstract6-12
引言12-21
第一章 三壳聚糖的合成及纳米粒的制备21-34
材料21
策略与结果21-33
一、N-三壳聚糖的制备21-22
二、N-三壳聚糖的结构表征22-24
1. 红外(FT-IR)图谱22-23
2. 核磁共振(1HNMR)图谱23
3. 黏度和分子量计算23-24
三、纳米粒的制备24-30
1. 乳糖化去甲斑蝥素的含量测定24-25
1.1 Hplc 色谱条件24
1.2 标准曲线24
1.3 精密度24-25
1.4 回收率25
2. 制备策略25
3. 质量评价25-26
3.1 粒径分布和多分散指数25
3.2 包封率25
3.3 载药量25-26
4. 纳米粒的制备处方优化26-28
5. 优化的纳米粒制备工艺28-30
5.1 纳米粒粒径28
5.2 红外表征28-29
5.3 透射电镜表征29-30
四、N-三壳聚糖纳米粒的体外释放特性30-33
讨论与小结33-34
第二章 乳糖化去甲斑蝥素及纳米粒的吸收机制探讨34-55
材料34-35
策略与结果35-53
一、Caco-2 细胞模型的建立和验证35-38
1. 细胞培养条件35
2. 细胞模型的验证35-38
2.1 细胞形态和酶表达情况35-36
2.2 TEER(跨膜电阻值)测定36-37
2.3 电镜观察细胞单分子层形态与结构37
2.4 酚红转运37-38
二、乳糖化去甲斑蝥素及纳米粒在 Caco-2 细胞模型中的摄取38-47
1. 乳糖化去甲斑蝥素细胞样品的高效液相色谱浅析策略的建立38-40
1.1 HPLC 色谱条件38-39
1.2 线性范围39
1.3 回收率和精密度39-40
2. MTT 实验40-41
3. 摄取实验41-47
3.1 时间对摄取的影响41-42
3.2 浓度对摄取的影响42-43
3.3 介质 pH 值对摄取的影响43
3.4 温度对摄取的影响43-44
3.5 外排抑制剂对摄取的影响44-45
3.6 纳米粒的细胞摄取实验45-46
3.7 FITC 标记纳米粒的制备及摄取实验46-47
三、乳糖化去甲斑蝥素及纳米粒在 Caco-2 细胞模型中的双向转运47-53
1. 转运实验中乳糖化去甲斑蝥素高效液相色谱浅析策略的建立47-48
1.1 HPLC 色谱条件47
1.2 线性范围47-48
1.3 回收率和精密度48
2. 转运实验48-53
2.1 浓度对转运的影响48-49
2.2 外排作用对药物转运的影响49-50
2.3 细胞内吞和旁路转运对药物转运的影响50-51
2.4 纳米粒的转运实验案例51-53
讨论与小结53-55
第三章 纳米粒的体外药效学和靶向性评价55-69
材料55-56
策略与结果56-68
一、对肝肿瘤细胞的毒性56-58
二、凋亡检测58-61
1. Hochest33258 染色58-59
2. 流式细胞术检测细胞凋亡(Annexin V- FITC/ PI 双染色法)59-61
三、肝肿瘤细胞的摄入61-68
1. HPLC 法定量浅析61-63
1.1 色谱条件61
1.2 线性范围61
1.3 回收率和精密度61-62
1.4 HepG2 细胞对 Lac-NCTD 及其纳米粒的摄入62-63
2. 激光共聚焦显微镜观察 FITC 标记纳米粒在细胞内的摄入与分布63-65
3. 原子力显微镜观察纳米粒的细胞摄入历程65-68
讨论与小结68-69
第四章 近红外小动物活体成像69-73
材料69-70
策略与结果70-72
一、荷瘤裸鼠模型建立70
二、Cy7 标记纳米粒的制备70-71
1. Cy7 标记 CS 和 TMC 的制备70
2. Cy7 标记的 Lac-NCTD-CS-NPs 和 Lac-NCTD-TMC-NPs 的制备70-71
三、Cy7 标记的纳米粒在裸鼠体内的近红外荧光成像71-72
讨论与小结72-73
第五章 纳米粒的体内药效学评价73-80
材料73-74
策略与结果74-79
一、荷瘤小鼠模型建立74
二、纳米粒在荷瘤小鼠体内的抗肿瘤活性74-79
1. 抑瘤率74-75
2. 小鼠肿瘤的病理组织学观察75-77
3. 小鼠各脏器的组织学观察77-79
讨论与小结79-80
全文总结80-83