摘要5-7
ABSTRACT7-9
致谢9-15
第一章 绪论15-21
1.1 真菌多糖的提取纯化15-17
1.1.1 真菌多糖的提取15
1.1.2 真菌多糖的纯化15-16
1.1.3 多糖的纯度及分子量测定16-17
1.2 真菌多糖的结构剖析17
1.2.1 真菌多糖的结构层次17
1.2.2 真菌多糖的结构剖析17
1.3 真菌多糖的构效联系17-18
1.4 真菌多糖的分子修饰18
1.5 真菌多糖的生理功能18-19
1.5.1 降血糖、血脂、血压,抗血栓功能18
1.5.2 利肝健胃功能18-19
1.5.3 抗癌、免疫调节功能19
1.5.4 抗氧化、抗衰老功能19
1.5.5 其他生理功能19
1.6 粒毛盘菌属多糖探讨的概况19-20
1.7 本课题探讨的内容与作用20-21
第二章 粒毛盘菌 YM281 胞内、外多糖产量的同步优化21-31
2.1 引言21
2.2 材料和策略21-24
2.2.1 材料21
2.2.2 主要试剂和仪器21-22
2.2.3 菌株培养22-23
2.2.4 生物量测定23
2.2.5 LEP 产量测定23
2.2.6 LIP 产量测定23
2.2.7 多糖测定标准曲线的绘制23
2.2.8 LIP 产量与生物量及 LEP 产量的相关性探讨23
2.2.9 满意度 D 值的计算23-24
2.2.10 单因素试验24
2.2.11 均匀试验24
2.3 结果与浅析24-30
2.3.1 多糖测定标准曲线的绘制24-25
2.3.2 LIP 产量与 LEP 产量及生物量的相关性25
2.3.3 碳、氮源对 LIP、 LEP 产量及整体满意度 D的影响25-26
2.3.4 生长因子对 LIP、 LEP 产量及整体满意度 D 的影响26
2.3.5 初始 pH 对 LIP、 LEP 产量及整体满意度 D 的影响26-27
2.3.6 发酵时间对 LIP、 LEP 产量及整体满意度 D 的影响27-28
2.3.7 匀试验结果28-30
2.4 本章小结30-31
第三章 粒毛盘菌 YM281 胞外多糖的提取纯化及结构剖析31-49
3.1 引言31
3.2 材料和策略31-35
3.2.1 材料31
3.2.2 主要试剂和仪器31-32
3.2.3 粒毛盘菌 YM281 胞外多糖发酵提取32-33
3.2.4 粒毛盘菌 YM281 胞外多糖纯化33
3.2.5 粒毛盘菌 YM281 胞外多糖( LEP)的分级分离33
3.2.6 多糖单一组分( LEP-1b)纯度和分子量的测定33
3.2.7 LEP-1b 单糖组分浅析33-34
3.2.8 高碘酸氧化和 Smith 降解34
3.2.9 LEP-1b 的化浅析34-35
3.2.10 LEP-1b 的部分酸水解浅析35
3.2.11 LEP-1b 的紫外光谱浅析35
3.2.12 LEP-1b 的红外光谱浅析35
3.2.13 LEP-1b 的核磁共振浅析35
3.2.14 LEP-1b 构象浅析35
3.3 结果与浅析35-47
3.3.1 LEP 的发酵、提取纯化35-37
3.3.2 LEP 的分级分离37-38
3.3.3 LEP-1b 的纯度和分子量检测38-39
3.3.4 LEP-1b 的结构剖析39-45
3.3.5 LEP-1b 的构象浅析45-47
3.4 本章小结47-49
第四章 粒毛盘菌 YM281 胞外多糖的降脂利肝活性49-59
4.1 引言49
4.2 材料和策略49-53
4.2.1 材料49
4.2.2 主要试剂和仪器49-51
4.2.3 动物实验51
4.2.4 血清和肝脏中脂质的测定51-52
4.2.5 血清和肝脏酶活及 MDA 含量测定52
4.2.6 粪便总胆汁酸、总胆固醇及脂肪排泄量测定52
4.2.7 肝组织形态学观察52-53
4.2.8 统计浅析53
4.3 结果与浅析53-58
4.3.1 模型小鼠建造53-54
4.3.2 LEP-1b 对小鼠摄食量和生长的影响54
4.3.3 LEP-1b 对小鼠血清、肝脏及粪便中脂质代谢的影响54-56
4.3.4 LEP-1b 的利肝活性56-58
4.4 本章小结58-59
第五章 结论与展望59-61
5.1 结论59
5.2 革新点59-60
5.3 展望60-61